Freudenau, Inga: ColE1-Plasmidproduktion in Escherichia coli: Simulation und Experiment. 2014
Content
- Dedication
- Inhaltsverzeichnis
- Abkürzungsverzeichnis
- Anmerkung zur Zitiertechnik
- Zusammenfassung
- Einleitung
- Grundlagen
- 3 Biologischer Hintergrund
- 3.1 Plasmid-DNA-Produktion für die medizinische Anwendung
- 3.2 Zwei Ebenen zur Kontrolle der Plasmidreplikation
- 3.3 Plasmidreplikationskontrolle von ColE1-ähnlichen Plasmiden
- 3.4 Metabolomanalysen
- 3.5 13C-Flussanalysen
- 4 Theoretischer Hintergrund
- 4.1 Modellierung in der Systembiologie
- 4.2 Was ist ein Modell?
- 4.3 Klassifizierung von Modellen
- 4.4 Die Erstellung eines mathematischen Modells
- 4.5 Mathematischer Hintergrund
- 5 Ziel der Arbeit
- Material und Methoden
- 6 Material
- 6.1 Verwendete Bakterienstämme
- 6.2 Primer, Transposon und Plasmidvektoren
- 6.3 Enzyme, Chemikalien, Kits und Verbrauchsmaterial
- 6.4 Laborgeräte
- 6.5 Software
- 6.6 Nährmedien und Medienzusätze
- 6.7 Medienzusätze
- 6.8 Puffer und Lösungen
- 7 Methoden
- 7.1 Kultivierung von Bakterien
- 7.1.1 Anzucht von Bakterien
- 7.1.2 Herstellung von Dauerkulturen
- 7.1.3 Bestimmung des Bakterientiters
- 7.2 Isolierung und Darstellung von DNA
- 7.2.1 Isolierung von Plasmid-DNA mittels „Thermo Scientific - GeneJET Plasmid Miniprep Kit“
- 7.2.2 Konzentrationsbestimmung einer DNA-Lösung
- 7.2.3 Agarosegelelektrophorese
- 7.2.4 Größenbestimmung von DNA-Fragmenten
- 7.2.5 Isolierung von DNA-Fragmenten aus Agarosegelen mittels „MN - PCR clean-up and Gel extraction Kit“
- 7.3 Restriktion und Modifikation von DNA
- 7.3.1 DNA- Restriktion mit Typ II Restriktionsendonukleasen
- 7.3.2 Dephosphorylierung von 5'-DNA-Enden
- 7.3.3 Polymerasekettenreaktion (PCR)
- 7.3.4 Aufreinigung von PCR Produkten mittels „MN - PCR clean-up and Gel extraction Kit“
- 7.3.5 Ligation
- 7.4 DNA-Transfer mittels chemischer Transformation
- 7.4.1 Herstellung chemisch kompetenter E. coli Zellen mittels CaCl2-Methode (Protokoll der Plasmid Factory)
- 7.4.2 Transformation kompetenter E. coli Zellen
- 7.5 Erstellung eines RNA-Standards und Durchführung von qRT-PCR
- 7.5.1 PCR zur Amplifikation des RNAI- und RNAII-Gens zum Einsatz in der T7-RNA-Polymerase-Reaktion
- 7.5.2 T7-RNA-Polymerase-Reaktion
- 7.5.3 Isolierung von RNA mittels „Qiagen - RNeasy plus Mini Kit“
- 7.5.4 Entfernung von DNA mittels DNaseI-Verdau
- 7.5.5 Konzentrationsbestimmung einer RNA-Lösung
- 7.5.6 qRT-PCR mittels „Bioline - SensiMix Probe One-Step Kit“
- 7.6 Absolute Quantifizierung von Plasmid-DNA
- 7.6.1 Absolute Quantifizierung der Plasmid-DNA durch die Firma Plasmid Factory
- 7.6.2 Absolute Quantifizierung der Plasmid-DNA durch die Firma CARPEGEN
- 7.6.3 Absolute Quantifizierung der Plasmid-DNA mittels Hochleistungsflüssigkeitschromatographie
- 7.7 Durchführung von Metabolomanalysen
- 7.7.1 Zellernte durch Schockgefrieren
- 7.7.2 Extraktion und Derivatisierung der intrazellulären Metabolite
- 7.7.3 Gaschromatographie-Massenspektrometrie
- 7.7.4 Auswertung der GC-MS-Messungen
- 7.8 Durchführung von 13C-Flussanalysen
- Ergebnisse
- 8 Modellierung der Plasmidreplikationskontrolle
- 8.1 Erstellung des strukturellen Modells
- 8.2 Erfassung der experimentellen Daten
- 8.2.1 Bestimmung der Wachstumsraten
- 8.2.2 Messung der RNAI- und RNAII-Konzentrationen
- 8.2.3 Messung der intrazellulären Plasmidkonzentrationen
- 8.3 Erstellung des dynamischen Modells
- 8.4 Simulationen der Plasmidreplikationskontrolle
- 8.5 Entwicklung einer unbeladbaren Transfer-RNA
- 9 Metabolomanalysen
- 10 13C-Flussanalysen
- Diskussion
- 11 Modellierung der Plasmidreplikationskontrolle
- 11.1 Das Modell
- 11.2 Untermauerung des Modells mit experimentellen Daten
- 11.3 Simulationen der Plasmidreplikationskontrolle
- 12 Das Metabolom und der intrazelluläre Glukosefluss
- Anhang
